Chief Editor

Leo A. Bockeria, MD, PhD, DSc, Professor, Academician of Russian Academy of Sciences, President of Bakoulev National Medical Research Center for Cardiovascular Surgery

Sort by

Issue's catalogue ➤ Клиническая физиология кровообращения, 2014, №4 ➤ Патогенез послеоперационных коагулопатий

Pathogenesis of postoperative coagulopathy

Authors: Samsonova N.N., Klimovich L.G., Rogal’skaya E.A.

Company:
A.N. Bakoulev Scientific Center for Cardiovascular Surgery, Rublevskoe shosse, 135, Moscow, 121552, Russian Federation

E-mail: Сведения доступны для зарегистрированных пользователей.

Link: Clinical Physiology of Blood Circulaiton. 2014; (): -

Quote as: Samsonova N.N., Klimovich L.G., Rogal’skaya E.A. Pathogenesis of postoperative coagulopathy. Klinicheskaya Fiziologiya Krovoobrashcheniya. 2014; 4: 17-24.

Keywords: bleeding thrombosis disseminated intravascular coagulation systemic inflammatory response syndrome activated соagulation factors protease-activated receptors.

Abstract

Surgical treatment of patients cardio-vascular profile, especially in operations with cardiopulmonary bypass is associated with disorders of hemostasis, which are accompanied by topical or systemic hemorrhage, local thrombotic complications or disseminated intravascular coagulation. Systemic inflammation is joined condition of postoperative infection, associat- ed with the release of cytokines, adhesion molecules, acute phase proteins and initiates the generation of thrombin and activated coagulation factors, which by means of receptors, protease-activated, with its side mononuclear cells to stimu- late the release of tissue factor portions new and inflammatory mediators. Processes of amplification and extension of inflammation and blood clotting, mediated by tissue factor, reduce the mechanisms of regulation of natural anticoagulant and lead to inhibition of fibrinolysis, intra- and extravascular fibrin deposition in organs, caused their clinical dysfunction. The modern concept of prevention, diagnosis and treatment of disorders of hemostasis in cardiac surgery personalized includes clinical and laboratory diagnosis of the real-time, use of activation markers of hemostasis and control methods of antithrombotic therapy.

References

1. Лобачёва Г.В. Факторы риска развития ранних осложне- ний и их коррекция у больных после операции на откры- том сердце. Автореф. дис. ... д-ра мед. наук. М.; 2000.
2. Бокерия Л.А., Ступаков И.Н., Климович Л.Г., Матве- ев Ю.Г., Самсонова Н.Н., Самородская И.В., Борисов Г.В. Методы доказательной медицины в оценке эффективно- сти контроля антикоагуляции при искусственном крово- обращении. Бюллетень НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН. 2001; 2 (5): 52–66.
3. Safuh Attar (ed.). Hemostasis in Cardiac Surgery. Armonk New York; 1999.
4. Самсонова Н.Н., Климович Л.Г., Андреев Н.В., Козар Е.Ф., Серегин К.О. Исследование эффективности и безопас- ности транексамовой кислоты при операциях на сердце в условиях искусственного кровообращения. Грудная и серд.-сосуд. хир. 2009; 6: 63–70.
5. Brohi K., Cohen M.J., Davenport R.A. Acute coagulopathy of trauma. Curr. Opin. Crit. Care. 2007; 13: 680–5.
6. Brohi K., Cohen M.J., Ganter M.T., Schultz M.J., Levi M., Mackersie R.C. et al. Acute coagulopathy of trauma: hypoper- fusion induces systemic anticoagulation and hyperfibrinolysis. J. Traum. Inj. Infect. Crit. Care. 2008; 64 (5): 1211–7.
7. Lier H., Bottiger B.W., Hinkelbein J., Krep H., Bernhard M. Coagulation management in multiple trauma: a systematic review. Intens. Care Med. 2011; 37 (4): 572–82.
8. Hardy J.F., de Moerloose P., Samama C.M. Massive transfu- sion and coagulopathy: pathophysiology and implications for clinical management. Can. J. Anesth. 2006; 53 (2): 40–57.
9. Lier H., Krep H., Schroeder S., Stuber F. Preconditions of he- mostasis in trauma: a review. The influence of acidosis, hypo- calcemia, anemia, and hypothermia on functional hemostasis in trauma. J. Traum. Inj. Infect. Crit. Care. 2008; 65 (4): 951–60.
10. Kashuk J.L., Moore E.E., Johnson J.L., Haenel J., Wilson M., Moore J.B. et al. Postinjury life threatening coagulopathy: is 1: 1 fresh frozen plasma: packed red blood cells the answer? J. Traum. Acute Care Surg. 2008; 65 (2): 261–71.
11. Levi M., Poll T., Schultz M. New insights into pathways that determine the link between infection and thrombosis. Netherl. J. Med. 2012; 70 (3): 114–20.
12. Lipinski S., Bremer L., Lammers T., Thieme F., Schreiber S., Rosenstiel P. Coagulation and inflammation Molecular insights and diagnostic implications. Hamostaseologie. 2011; 2:
94–101.
13. Бокерия Л.А., Климович Л.Г., Потехина А.В., Путя-
то Н.А., Самсонова Н.Н. Механизмы вовлечения инги- биторов свертывания в развитие воспалительной реакции и перспективные направления антикоагулянтной тера- пии. Клин. физиол. кровообр. 2004; 1: 46–55.
14. Самсонова Н.Н., Климович Л.Г. Современные представле- ния о системе гемостаза. В кн.: Бокерия Л.А., Голухова Е.З. (ред.) Клиническая кардиология: диагностика и лечение. М.: НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН; 2011; 3: 485–95.
15. Oukka M., Kim S.T., Lugo G., Sun J., Wu L.C., Glim- cher L.H. A Mammalian Homolog of Drosophila schnurri, KRC, Regulates TNF Receptor-Driven Responses and Interacts with TRAF2. Molecular. Cell. 2002; 9 (1): 121–31.
16. Gando S. Role of fibrinolysis in Sepsis. Semin. Thromb. Hemost. 2013; 39: 392–9.
17. Gando S., Sawamura A., Hayakawa M. Infectious and non- infectious insults and body responses. Jp. J. Acute Med. 2011; 35: 747–52.
18. Levi M., Schultz M., Poll T. Sepsis and thrombosis. Semin. Thromb. Hemost. 2013; 39: 559–66.
19. Lier H., Vorweg M., Hanke A., Görlinger K. Thromboelas- tometry guided therapy of severe bleeding. Hämostaseologie. 2013; 1: z1–11.
20. Купряшов А.А. Кровосбережение в детской кардиохирур- гии: Дис. ... д-ра мед. наук. М.; 2012.
21. American Society of Anesthesiologist. Practice guidelines for preoperative blood transfusion and adjuvant therapies. Anesthesiology. 2006; 105: 198–208.
22. Самсонова Н.Н., Климович Л.Г., Диасамидзе Л.Э., Ку- пряшов А.А. Использование рекомбинантного активиро- ванного фактора VII в кардиохирургии. Тромбоз, гемостаз и реология. 2011; 4: 41–7.
23. Самсонова Н.Н., Рыбка М.М., Лобачева Г.В., Климович Л.Г., Козар Е.Ф., Щеголькова Т.С., Рогальская Е.А. Исследо- вания эффективности и безопасности применения пре- парата коагил-VII – эптаког альфа (активированный) при повышенной кровоточивости у больных, опериро- ванных в условиях искусственного кровообращения. Тромбоз, гемостаз и реология. 2013; 3 (51): 52–6.
24. Рыбка М.М., Самсонова Н.Н., Лобачёва Г.В., Климо- вич Л.Г., Козар Е.Ф., Рогальская Е.А. Эффективность и безопасность применения препарата коагил-VII – эптаког альфа (активированный) при хирургической кор- рекции врожденных пороков сердца у новорожденных и детей раннего возраста. Тромбоз, гемостаз и реология. 2014; 1 (57): 9–14.
25. Чарная М.А., Морозов Ю.А. Концентраты протромбино- вого комплекса в терапии коагулопатий негемофильного генеза (обзор литературы). Кардиол. и серд.-сосуд. хир. 2012; 2: 104–8.
26. Taylor F.B. Jr, Toh C.H., Hoots W.K., Wada H., Levi M. Towards definition, clinical and laboratory criteria, and a scor- ing system for disseminated intravascular coagulation on behalf of the Scientific Subcommittee on Disseminated Intravascular Coagulation of the International Society on Thrombosis and Haemostasis. Thromb. Haemost. 2001; 86: 1327–30.
27. Toh C.H., Hoots W.K. The scoring system of the Scientific and Standardisation Committee on Disseminated Intravascular Coagulation of the International Society on Thrombosis and Haemostasis: a 5 year overview. J. Thromb. Haemost. 2007; 5 (3): 604–6.
28. Gando S., Saitoh D., Ogura H., Fujishima S., Mayumi T., Araki T. et al. A multicenter, prospective validation study of the Japanese Association for Acute Medicine disseminated intravascular coagulation scoring system in patients with severe sepsis. Crit. Care. 2013; 17: R111.
29. Rogalskaya E., Samsonova N., Climovich L., Yaroustovsky M., Krotenko N. Disseminated intravascular coagulation scoring system in cardiac surgery patients with postoperative severe sepsis. J. Thromb. Haemost. Special Issue: Abstracts of the 60th Annual Meeting of the Scientific and Standardization Committee of the International Society on Thrombosis and Haemostasis June 23–26. 2014; 12 (s1): 27.
30. Самсонова Н.Н., Климович Л.Г., Рогальская Е.А., Ярус- товский М.Б., Козар Е.Ф., Кротенко Н.П., Горбенко И.Ю. Критерии оценки синдрома ДВС у пациентов с заболева- ниями сердца и сосудов. Тромбоз, гемостаз и реология. 2014; 3.
31. Ярустовский М.Б., Самсонова Н.Н., Рогальская Е.А., Климович Л.Г., Плющ М.Г., Абрамян М.В. и др. Экспресс-диагностика уровня эндотоксемии в послеопера- ционном периоде у кардиохирургических больных. Анес- тезиол. и реаниматол. 2013; 3: 25–9.
32. Gebbink M.F. Tissue-type plasminogen activator-mediated plasminogen activation and contact activation, implications in and beyond haemostasis. J. Thromb. Haemostasis. 2011; 9 (Suppl. 1): 174–81.
33. Hack C.E., ten Cate H. Plasminogen activator and plasmino- gen activator inhibitor I release during experimental endotox- aemia in chimpanzees: effect of interventions in the cytokine and coagulation cascades. Clinical Science. 1995; 88: 587–94.
34. Strauss R., Wehler M., Methler K., Kreutzer D., Koebnick C., Hahn G. Thrombocytopenia in patients in the medical inten- sive care unit: bleeding prevalence, transfusion requirements, and outcome. Crit. Care Med. 2002; 30 (8): 1765–71.
35. Vanderschueren S., De Weerdt A., Malbrain M., Vankersscha- ever D., Frans E., Wilmer A. et al. Thrombocytopenia and pro- gnosis in intensive care. Crit. Care Med. 2000; 28 (6): 1871–6.
36. Akca S., Haji-Michael P., de Mendonça A., Suter P.M., Levi M., Vincent J.l. Time course of platelet counts in critical- ly ill patients. Crit. Care Med. 2002; 30 (4):753–6.
37. Семьянская А.Б., Мумладзе К.В., Хабаров А.Е., Крышо- ва Е.С. Эффективность тромбопрофилактики у детей первого года жизни с ВПС в ОРИТ. Бюллетень НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН. 2014; 15 (3): 175.
38. Бокерия Л.А., Лобачева Г.В., Харькин А.В., Очаков- ская Е.Ю., Самсонова Н.Н., Климович Л.Г. Первый опыт применения рекомбинантного активированного протеи- на С в комплексной интенсивной терапии сепсиса у но- ворожденных и грудных детей после кардиохирургичес- ких вмешательств. Детские болезни сердца и сосудов. 2006; 35: 60–4.
39. Levi M., ten Cate H., Bauer K.A., Van der Poll T., Edging- ton T.S., Büller H.R. et al. Inhibition of endotoxin-induced activation of coagulation and fibrinolysis by pentoxifylline or by a monoclonal anti-tissue factor antibody in chimpanzees. J. Clin. Invest. 1994; 93 (1): 114–20.
40. Abraham E., Reinhart K., Opal S., Demeyer I., Doig C., Rodriguez A.L., OPTIMIST Trial Study Group. Efficacy and safety of tifacogin (recombinant tissue factor pathway inhibitor) in severe sepsis: a randomized controlled trial. JAMA. 2003; 290 (2): 238–47.
41. Hinshaw L.B., Emerson T.E. Jr, Chang A.C., Duerr M., Peer G., Fournel M. Study of septic shock in the non-human primate: Relationship of pathophysiological response to therapy with anti-TNF antibody. Circul. Shock. 1994; 44 (4): 221–9.
42. Hinshaw L.B., Emerson T.E., Taylor F.B. Jr, Chang A.C., Duerr M., Peer G.T., Fournel M.A. Lethal Staphylococcus aureus-induced shock in primates: prevention of death with anti-TNF antibody. J. Traum. Acute Care Surg. 1992; 33: 568–73.
43. Schouten M., van’t Veer C., van der Poll T., Levi M. Effect of the factor V Leiden mutation on the incidence and outcome of severe infection and sepsis. Neth. J. Med. 2012; 70 (7): 306–10.
44. Middeldorp S., Levi M. Thrombophilia: an update. Semin. Thromb. Hemost. 2007; 33 (6): 563–72.

If you found mistakes, select text and press Alt+A